- Код статьи
- S30345421S0026364825040049-1
- DOI
- 10.7868/S3034542125040049
- Тип публикации
- Статья
- Статус публикации
- Опубликовано
- Авторы
- Том/ Выпуск
- Том 59 / Номер выпуска 4
- Страницы
- 300-312
- Аннотация
- Дереворазрушающие грибы рода являются одними из самых распространенных полипоровых грибов в мире, и интерес к их изучению постоянно растет в связи с тем, что они являются продуцентами многих биологически активных соединений. Наиболее распространенным видом средней полосы России является трутовик плоский, Целью нашего исследования было охарактеризовать внутривидовой генетический полиморфизм в Московском регионе по половой и соматической совместимости, а также вариабельность ITS последовательности у 26 его природных изолятов. Разработанная методика воссоздания полного жизненного цикла в лабораторных условиях, включая получение фертильного гимения, позволила провести генетический анализ разнообразия аллелей локусов половой совместимости в мон-мон и ди-мон скрещиваниях. У 21 природного изолята обнаружили по крайней мере 8 аллелей matА локуса и 7 аллелей matВ локуса. Общее генетическое разнообразие антагонистических реакций вегетативной несовместимости по Шеннону составило Hvc = 1.216, что свидетельствует о высоком уровне генетического полиморфизма детерминантов вегетативной несовместимости. Разнообразие фенотипических проявлений реакций антагонизма свидетельствует о вероятной мультиаллельности локусов вегетативной несовместимости. Зависимости между типом антагонизма и географическим местоположением изолятов обнаружено не было; при этом вегетативно совместимые клоны были обнаружены только в пределах общего субстрата. Несмотря на генетический полиморфизм и мультиаллельность локусов половой и соматической совместимости, ITS последовательности у московских изолятов продемонстрировали отсутствие дивергенции. Поэтому ITS последовательности могут служить надежным баркодом для видовой идентификации/верификации природных изолятов Наше исследование показало, что в Московском регионе популяция трутовика плоского распространена на большой территории при отсутствии значительной внутрипопуляционной дифференциации по половой и соматической совместимости.
- Ключевые слова
- базидиомицеты локусы половой совместимости половая и вегетативная совместимость Ganoderma ITS-филогения
- Дата публикации
- 14.05.2025
- Год выхода
- 2025
- Всего подписок
- 0
- Всего просмотров
- 26
Библиография
- 1. Бондарцева М. А. Определитель грибов России. Порядок афиллофоровые. Вып. 2. СПб.: Наука, 1998. 391 с.
- 2. Bondartseva M. A. Identification guide to fungi of Russia. Order Aphyllophorales. Issue 2. Nauka, SPb., 1998. (In Russ.).
- 3. Adaskaveg J. E., Gilbertson R. L. Cultural studies and genetics of sexuality of Ganoderma lucidum and G. tsugae in relation to the taxonomy of the G. lucidum complex. Mycologia. 1986. V. 78 (5). P. 694-705.
- 4. Cheng C. R., Yue Q. X., Wu Z. Y. et al. Cytotoxic triterpenoids from Ganoderma lucidum. Phytochemistry. 2010. V. 71 (13). P. 1579-1585. https://doi.org/10.1016/j.phytochem.2010.06.005
- 5. Elliott M. L., Jardin E. A., Ortiz J. V. et al. Genetic variability of Ganoderma zonatum infecting palms in Florida. Mycologia. 2018. V. 110 (2). P. 339-346. https://doi.org/10.1080/00275514.2018.1442083
- 6. Espinosa--García V., Mendoza G., Shnyreva A. V. et al. Biological activities of different strains of the genus Ganoderma spp. (Agaricomycetes) from Mexico. Int. J. Med. Mushrooms. 2021. V. 23 (2). P. 67-77. https://doi.org/10.1615/IntJMedMushrooms.2021037451
- 7. Gardes M., Bruns T. D. ITS primers with enhanced specificity for basidiomycetes application to the identification of mycorrhizae and rusts. Mol. Ecol. 1993. V. 2. P. 132-118. https://doi.org/10.1111/j.1365-294x.1993.tb00005.x
- 8. Glass N. L., Kaneko I. Fatal attraction: Non-self-recognition and heterokaryon incompatibility in filamentous fungi. Eukaryotic Cell. 2003. V. 2 (1). P. 1-8. https://doi.org/10.1128/ec.2.1.1-8.2003
- 9. Guler P., Bicer H. The somatic incompatibility in Trametes versicolor (L.) Lyod. J. Appl. Biol. Sci. 2014. V. 8 (2). P. 22-26.
- 10. Hall T. A. BioEdit: A user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for windows 95/98/NT. Nucleic Acids Symp. Ser. 1999. V. 41. P. 95-98.
- 11. Hansen E. M., Stenlid J., Johansson M. Genetic control of somatic incompatibility in the root-rotting basidiomycete Heterobasidion annosum. Mycol. Res. 1993. V. 97 (10). P. 1229-1233.
- 12. Hseu R., Wang H. A study on sexuality of the Ganoderma species. Memoirs of the College of Agriculture, National Taiwan University. 1996. V. 36 (4). P. 342-349.
- 13. Kauserud H. Widespread vegetative compatibility groups in the dry-rot fungus Serpula lacrymans. Mycologia. 2004. V. 96 (2). P. 232-239.
- 14. Lee S. B., Milgroom M. G., Taylor J. W. A rapid, high yield miniprep method for isolation of total genomic DNA from fungi. Fungal Genet. Biol. 1988. V. 35. P. 23-24.
- 15. Liu X., Yuan J. P., Chung C. K. et al. Antitumor activity of the sporoderm--broken germinating spores of Ganoderma lucidum. Cancer Lett. 2002. V. 182 (2). P. 155-161. https://doi.org/10.1016/s0304-3835 (02)00080-0
- 16. Nilsson R. H., Kristiansson E., Ryberg M. et al. Intraspecific ITS variability in the kingdom Fungi as expressed in the internal sequence databases and its implications for molecular species identification. Evolutionary Bioinformatics. 2008. V. 4. P. 193-201. https://doi.org/10.4137/ebo.s653
- 17. Page D. E., Glen M., Puspitasari D. et al. Sexuality and mating types of Ganoderma philippii, Ganoderma mastoporum and Ganoderma australe, three basidiomycete fungi with contrasting ecological roles in south-east Asian pulpwood plantations. Australasian Plant Pathol. 2018. V. 47. P. 83-94. https://doi.org/10.1007/s13313-017-0531y
- 18. Paterson R. R.M. Ganoderma - a therapeutic fungal bio factory. Phytochemistry. 2006. V. 67 (18). P. 1985-2001. https://doi.org/10.1016/j.phytochem.2006.07.004
- 19. Pilotti C. A., Sanderson F. R., Aitken E. A.B. Sexuality and interactions of monokaryotic and dikaryotic mycelia of Ganoderma boninense. Mycol. Res. 2002. V. 106 (11). P. 1315-1322. https://doi.org/10.1017/S0953756202006755
- 20. Ryvarden L., Melo I. Poroid fungi of Europe. Synopsis Fungorum. V. 37. Fungiflora, Oslo, 2017.
- 21. Shnyreva A. V., Badalyan S. M., Shnyreva A. A. Analysis of intraspecies genetic variability among collections of medicinal red belt conk mushroom, Fomitopsis pinicola (Agaricomycetes). Int. J. Med. Mushrooms. 2019. V. 21 (3). P. 291-300. https://doi.org/10.1615/IntJMedMushrooms.2019030083
- 22. Shnyreva A. V. Somatic and sexual compatibility in basidiomycete fungi: application to population analysis of the summer oyster mushroom Pleurotus ostreatus. In: V. K. Gupta (ed.). Fungal biology and biotechnology. LAP Lambert Academic Publishing, Saarbrucken, 2010, pp. 259-271.
- 23. Shnyreva A. V., Druzhinina I. S., Dyakov Yu. T. Genetic structure of the Pleurotus ostreatus sensu lato complex in Moscow region. Russ. J. Genet. 1998. V. 34 (12). P. 1371-1378.
- 24. Tamura K., Stecher G., Kumar S. MEGA11: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 11. Mol. Biol. Evol. 2021. V. 38 (7). P. 3022-3027. https://doi.org/10.1093/molbev/msab120
- 25. Worral J. J. Somatic incompatibility in Basidiomycetes. Mycologia. 1997. V. 89 (1). P. 24-36.
- 26. Zervakis G., Balis C. A pluralistic approach in the study of Pleurotus species with emphasis on compatibility and physiology of the European morphotaxa. Mycol. Res. 1996. V. 100 (6). P. 717-731.
- 27. Zmitrovich I. V., Volobuev S. V., Dudka V. A. et al. Ganoderma applanatum (Polyporales, Basidiomycota) at the Saint Petersburg area. Mikologiya i fitopatologiya. 2019. V. 53 (6). P. 354-362. https://doi.org/10.1134/S0026364819060084
