ОБНМикология и фитопатология Mycology and Phytopathology

  • ISSN (Print) 0026-3648
  • ISSN (Online) 3034-5421

Особенности формирования микобиоты угольных отвалов в высоких широтах по данным метагеномного исследования

Код статьи
S30345421S0026364825040013-1
DOI
10.7868/S3034542125040013
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 59 / Номер выпуска 4
Страницы
271-278
Аннотация
Изучены особенности формирования микобиоты в породных отвалах угольных шахт и карьеров разного возраста с использованием метагеномных данных. Показана динамика комплексов грибов в ходе сукцессионного процесса в арктической тундре, южной тундре и лесотундре. Образцы породы были отобраны из отвалов в Баренцбурге (Шпицберген), Воркуте (Республика Коми) и Сусумане (Магаданская обл.). Результаты показывают, что биоразнообразие грибов в основном представлено отделом В хроносериях отвалов обнаружена высокая доля грибов классов и. В хроносерии Шпицбергена выявлено 58 родов, республики Коми - 59 родов, в хроносерии Магаданской обл. - 65 родов. Показано, что сообщества в угольных отвалах разнообразны и изменяются в зависимости от возраста отвалов и природных зон Арктики. Также показано, что сообщества отвалов в пределах одной хроносерии имеют между собой большее сходство, чем с сообществами отвалов других природных зон.
Ключевые слова
биоразнообразие грибное сообщество добыча угля метагеномные исследования отвалы секвенирование следующего поколения хроносерия
Дата публикации
02.05.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
30

Библиография

  1. 1. Abakumov E.V. Accumulation and transformation of organic matter in different-aged dumps from sand quarries. Eurasian Soil Sci. 2008. V. 41. P. 844-851. https://doi.org/10.1134/S1064229308080061
  2. 2. Detheridge A.P., Comont D., Callaghan T.M. et al. Vegetation and edaphic factors influence rapid establishment of distinct fungal communities on former coal-spoil sites. Fungal Ecol. 2018. V. 33. P. 92-103. https://doi.org/10.1016/j.funeco.2018.02.002
  3. 3. Domsch K.H., Gams W., Anderson T.H. Compendium of soil fungi. IHW-Verlag, Eching, 2007.
  4. 4. Elhottova D., Kristufek V., Frouz J. et al. Screening for microbial markers in Miocene sediment exposed during open-cast brown coal mining. Antonie Van Leeuwenhoek. 2006. V. 89. P. 459-463.
  5. 5. Evans H.C. Thermophilous fungi of coal spoil tips. Occurrence, distribution and temperature relationships. Trans. Br. Mycol. Soc. 1971. V. 57. P. 255-266.
  6. 6. Fungal metagenomic sequencing. demonstrated protocol. 2025. https://support.illumina.com/content/dam/illumina--support/documents/documentation/chemistry_documentation/metagenomic/fungal-metagenomic-demonstrated--protocol 1000000064940-01.pdf. Accessed 10.01.2025.
  7. 7. Fungal sequencing and classification with the ITS metagenomics protocol. 2018. https://www.illumina.com/content/dam/illumina--marketing/documents/products/appnotes/its-metagenomics-app-note 1270-2018-001 web.pdf. Accessed 10.01.2025.
  8. 8. Gadd G.M. Metals, minerals and microbes: geomicrobiology and bioremediation. Microbiology. 2010. V. 156. P. 609-643. https://doi.org/10.1099/mic.0.037143-0
  9. 9. Gräfenhan T., Schroers H.-J., Nirenberg H.I. et al. An overview of the taxonomy, phylogeny, and typification of nectriaceous fungi in Cosmospora, Acremonium, Fusarium, Stilbella, and Volutella. Stud. Mycol. 2011. V. 68. P. 79- 113. https://doi.org/10.3114/sim.2011.68.04
  10. 10. Hugenholtz P., Goebel B.M., Pace N.R. Impact of culture--independent studies on the emerging phylogenetic view of bacterial diversity. Journal of bacteriology. 1998. V. 180 (18). P. 4765-4774.
  11. 11. Iliushin V.A. First find of Cadophora antarctica Rodr.-Andrade, Stchigel, Mac Cormack et Cano in the Arctic. Czech Polar Reports. 2020. V. 10 (2). P. 147-152. https://doi.org/10.5817/CPR2020-2-11
  12. 12. Iliushin V.A., Kirtsideli I.Y. Dynamics of complexes of microscopic fungi in the process of overgrowing spoil tips of coal mines in the southern tundra zone (Komi Republic). Mikologiya i fitopatologiya. 2021. V. 55 (2). P. 129-137. https://doi.org/10.31857/S0026364821020045
  13. 13. Iliushin V.A., Kirtsideli I.Y., Sazanova N.A. Diversity of microfungi of coal mine spoil tips in the Magadan Region, Russia. Current Research in Environmental and Applied Mycology (Journal of Fungal Biology). 2022b. V. 12 (1). P. 136-146. https://creamjournal.org/pdf/CREAM_12_1_11.pdf
  14. 14. Iliushin V.A., Kirtsideli I.Y., Vlasov D. Yu. Diversity of culturable microfungi of coal mine spoil tips in Svalbard. Polar Science. 2022a. V. 32. e100793. https://doi.org/10.1016/j.polar.2022.100793
  15. 15. Ji C., Huang J., Yu H. et al. Do the reclaimed fungal communities succeed toward the original structure in eco-fragile regions of coal mining disturbances? A case study in North China Loess--Aeolian sand area. Front. Microbiol. 2022. V. 13. e770715. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.770715
  16. 16. Хабибуллина Ф.М., Кузнецова Е.Г., Панюков А.Н. (Khabibullina et al.) Трансформация растительности, почв и почвенной микробиоты в зоне воздействия породных отвалов угольной шахты “Воркутинская” // Теоретическая и прикладная экология. 2015. № 4. С. 30-37.
  17. 17. Khabibullina F.M., Kuznetsova E.G., Panyukov A.N. Transformation of vegetation, soils, and soil microbiota in the impact zone of the coal mine “Vorkutinskaya”. Theoretical and Applied Ecology. 2015. V. 4. P. 30-37. (In Russ.). https://doi.org/10.25750/1995-4301-2015-4-030-037
  18. 18. Kompała-Bąba A., Bierza W., Błonska A. et al. Vegetation diversity on coal mine spoil heaps - how important is the texture of the soil substrate? Biologia. 2019. V. 74. P. 419-436. https://doi.org/10.2478/s11756-019-00218x
  19. 19. Krause--Jensen D., Duarte C.M. Expansion of vegetated coastal ecosystems in the future Arctic. Front. Mar. Sci. 2014. V. 1. Art. 77. https://doi.org/10.3389/fmars.2014.00077
  20. 20. Marescotti P., Roccotiello E., Zotti M. et al. Influence of soil mineralogy and chemistry on fungi and plants in a waste-rock dump from the Libiola mine (eastern Liguria, Italy). Periodico di Mineralogia. 2013. V. 82. P. 141-162.
  21. 21. Quast C., Pruesse E., Yilmaz P. The SILVA ribosomal RNA gene database project: Improved data processing and web-based tools. Nucleic Acids Res. 2013. V. 41. D590-D596. https://doi.org/10.1093/nar/gks1219
  22. 22. Ruiz--Jaen M.C., Mitchell Aide T. Restoration success: how is it being measured? Restor. Ecol. 2005. V. 13. P. 569-577. https://doi.org/10.1111/j.1526-100X.2005.00072.x
  23. 23. Sazanova K.V., Zelenskaya M.S., Vlasov A.D. et al. Microorganisms in superficial deposits on the stone monuments in Saint Petersburg. Microorganisms. 2022. V. 10. P. 316. https://doi.org/10.3390/microorganisms10020316
  24. 24. Stevens J. Applied multivariate statistics for the social sciences. Erlbaum, Hillsdale, 1986.
  25. 25. Ulfig K., Korcz M. Isolation of keratinolytic fungi from a coal mine dump. Mycopathologia. 1995. V. 129. P. 83-86. https://doi.org/10.1007/BF01103466
  26. 26. Vlasov D.Y., Abakumov E.V., Nadporozhskaya M.A. et al. Lithosols of king george island, western Antarctica. Eurasian Soil Sci. 2005. V. 38. P. 681-687.
  27. 27. Wise D.L. Bioprocessing and biotreatment of coal. Marcel Dekker, N.Y., 1990.
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека